质粒纯化柱与PCR产物纯化柱能混用吗？答案来了

PCR产物纯化柱又双叒不够用了怎么办，能不用质粒纯化柱来替代使用呢？

 让我们先来看看纯化柱的结构和原理：

纯化柱有一层硅胶膜，材质是玻璃纤维的，能够能够选择性地吸附DNA和RNA，作用类似于一块过滤器。

在高盐浓度和低pH条件下，硅胶膜能够选择性地吸附DNA和RNA。而在低盐浓度和高pH条件下，DNA和RNA则会被释放出来。

硅胶膜的表面携带有大量修饰的硅羟基，在溶液中会解离，产生负电荷。当DNA或RNA与盐离子结合后，它们会与硅胶膜表面的硅羟基形成电桥，从而被吸附在硅胶膜上，而其他物质则被洗脱掉。

在PCR纯化过程中，加入binding buffer可以降低溶液的pH值，从而让DNA容易被吸附在硅胶膜上。

所以应该要使样本在加入柱子时，所处的溶液的pH值小于7。随后，使用的washing buffer中乙醇浓度不得低于50%，通常在70%至80%之间。

最后，完成洗涤以后，进行洗脱，洗脱液可以使用去离子水或者试剂盒配的TE缓冲液。DNA比较稳定，提取后可以长期保存在-20度冰箱。

 总的来说，PCR产物纯化柱和质粒纯化柱是可以混用的原因主要有三点：

1、相似的结构组成：两种类型的纯化柱通常都包含硅胶膜，其表面有大量修饰的硅羟基（Si-OH）。

2、相似的工作原理：两种纯化柱都利用硅胶膜的吸附特性来分离DNA，硅胶膜上的修饰的硅羟基与DNA或RNA形成电桥，可吸附DNA，并且可以让DNA根据不同的盐浓度和PH值进行释放，实现吸附的可逆性。

3、相似的缓冲液条件：PCR产物纯化柱和质粒纯化柱在洗脱过程中使用的缓冲液、洗脱液等相似度高，比如，洗涤液中的乙醇浓度不得低于50%，一般70%--80%之间。

都需要在一定的pH值下进行洗脱，而洗脱液中的乙醇浓度也需保持在相似的范围内。