包病毒滴度低或不出毒咋回事？这个慢病毒感染增强液救大命了

有多少人感觉病毒包装就是一个玄学，为啥别人次次成功，而自己做经常滴度低，感染效率不理想？

首先让我们看看影响病毒包装的因素

慢病毒

优点：它能把自己带的基因敲入细胞的基因组里，变成细胞基因组DNA的一部分。只要这个细胞活着并且分裂，外源的DNA就能一直表达下去。所以适合需要长期、稳定做研究的实验。

包装周期相对短点。

缺点：① 感染细胞的效率没那么高；② 它自己不能“繁殖”，所以病毒产量低、浓度（滴度）也低，通常需要先体外实验，不太够直接做动物注射。

腺病毒

优点：感染效率高！而且纯化后能直接注射到动物体内。它还能体外“扩增”，一次能拿到很高浓度的病毒。

缺点：它不进基因组，只在细胞质里暂存，过一阵子就被细胞清除了。所以是短期（瞬时） 表达。

包装周期更长。

包装病毒是个精细活，成功与否取决于一串“流水线”上的每个环节：

细胞状态：用来包装病毒的“工厂”细胞必须健康。

载体和质粒：用的“图纸”（载体系统）要靠谱（建议用成熟的商业系统），而且你构建好的“施工图”（重组质粒）不能有错。

操作与监控：转染这个“开工”步骤要精准，之后24、48小时要盯着细胞工厂的状态和有没有荧光（报告基因）来看初步成败。

基因本身：你研究的基因如果太大，或者它表达的蛋白对细胞有毒性，也会严重影响病毒产量。

感染效率不高别只怪病毒，这三方面都可能是原因：

病毒本身：浓度（滴度）够不够高？

目标细胞：不同的细胞天生对病毒的“易感性”差别很大。

你的操作：比如加入病毒时的细胞密度、病毒用量、培养时间等，都需要自己优化。

做难转细胞的病毒感染实验的人都懂吧… 慢病毒滴度不可控，难提高，导致感染效率总是不理想！

总想着重复包装来提高滴度，还是做不好，包病毒包到怀疑人生。直到挖到这款带病毒感染增强液的试剂盒！

加了自带的增强液，包病毒的步骤都没变，滴度也没增加，但是效率直接飙升！

省了多少重复实验的功夫谁懂啊！

试剂盒里试剂配得整整齐齐，新手跟着说明书走也不翻车，关键是增强液不用额外花钱买，性价比直接拉满～

用一样的低滴度的GFP慢病毒感染细胞，感染结束后48小时拍照。

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