EdU-594 细胞增殖检测试剂盒
无需使用抗体、操作简单灵敏度高
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产品简介
EdU (5-Ethynyl-2’- deoxyuridine)是一种胸腺嘧啶核苷类似物,可以代替胸腺嘧啶(T)掺入到正在复制的 DNA 分子中,随后 EdU 与荧光染料发生快速的点击反应,新合成的 DNA 分子被荧光标记,通过检测荧光信号可快速检测细胞的增殖能力。
EdU 法无需使用抗体、操作简单、灵敏度高,是一种在 BrdU 法基础上升级的新方法。本试剂盒可用于培养细胞及组织切片的检测。
产品组分
组分 | 浓度 | 试剂量 |
EdU 溶液(试剂 A) | 1000X | 100 μL |
反应缓冲液(试剂 B) | 1X | 50 mL |
催化剂溶液(试剂 C) | 50X | 1000 μL |
荧光染料溶液(试剂 D) | 500X | 100 μL |
缓冲添加剂(试剂 E) | 粉末 | 2 管 |
Hoechst 33342 (试剂 F) | 500X | 100 μL |
备注:荧光光谱数据(Ex/Em): 488 Azide:490/513 nm;555 Azide:550/561 nm;
594 Azide:585/609 nm;647A Azide:648/664 nm.
Hoechst 33342:346/460nm.
保存条件
本产品冰袋运输,4˚C 保存,一年内有效。注:Hoechst 33342 (试剂 F),可分装后-20˚C 保存,短期内使用可保存于4˚C。荧光试剂注意避光使用。冰袋运输。
自备试剂
1. 10 mM PBS(pH7.2-7.6)
2. 细胞固定液(含 4%多聚甲醛的 PBS)
3. 透膜液(0.2% Triton X-100 in PBS)
4. 细胞培养板(48/24/12/6 孔板);流式细胞分析管(如 12×75 mm)
注意事项
- EdU 使用浓度说明:本试剂盒推荐使用 50 μM 的浓度孵育 2 小时,由于细胞类型、密度以及细胞增殖速度都会影响 DNA复制过程中 EdU 的掺入,因此建议首次实验时对 EdU 的最佳使用浓度进行优化,以达到更好的实验效果;同时,可设不加 EdU 的阴性对照组,以便进行染色背景分析。
- 组织切片染色过程中需防止干片,干片会导致背景过强影响实验结果。
- 试剂平衡至室温并瞬时离心再使用。
- 为了您的安全与健康,实验过程中请穿实验服并佩戴口罩和一次性手套
使用说明(贴壁细胞)
细胞培养
每孔接种 0.5×10^5 ~1×10^6 细胞于 12 孔板中,细胞正常生长且密度不超过80%为宜。
EdU 标记
1.设置 1 个不加 EdU 培养基的阴性对照组,以便进行流式检测数据的染料背景分析。
2.用细胞培养基将 1000 X 的 EdU 溶液(试剂 A)稀释至 1X,制备适量 50 μM EdU 培养基。
注意: 1)EdU 浓度与孵育时间相关,短时间孵育育(<2h)宜采用高浓度(10~50 μM),长时间孵育(>24h)宜采用低浓度(10 μM);
3.将细胞培养基更换为 EdU 培养基,每孔加入 0.5mL,孵育 2 小时。
注意: 1)最佳孵育时间与细胞周期相关(表 1),大多数肿瘤细胞系均可采用 2 小时孵育时间;
2)EdU 培养基用量参考表 2;
细胞系 |
人胚胎细胞 |
人神经细胞 |
人宫颈癌细胞 |
人胚肾细胞系 |
酵母细胞 |
细胞周期 |
30 min |
5d |
20-24h |
22-25h |
3h |
孵育时间 |
5min |
1d |
2h |
2h |
20min |
|
96 孔板 |
48 孔板 |
24 孔板 |
12 孔板 |
6 孔板 |
EdU 培养基 |
100 μL |
200 μL |
300 μL |
500 μL |
1 m L |
染色反应液 |
100 μL |
200 μL |
300 μL |
500 μL |
1 m L |
备注:表 2 为贴壁细胞的使用量参考,悬浮细胞和组织切片的使用量适当调整
EdU 检测
- EdU标记完成后,吸去培养基,用 PBS 洗涤细胞 1 次。
- 每孔加入 5mL 的固定液,室温固定 10 分钟。注意:如果用于流式测试,则用胰酶消化之后再进行固定。
- 去除固定液,用 PBS洗涤细胞 2 次。
- 去除 PBS,每孔加 5mL 透膜液 0.2% TritonX-100 室温孵育 10 分钟。
- 去除透膜液,用 PBS洗涤细胞 2 次。
- 配制缓冲添加剂溶液:用 3mL 去离子水溶解一管缓冲添加剂(试剂 E),混匀至全部溶解,即为缓冲添加剂溶液。配制后适当分装,并于-20ºC 保存。缓冲添加剂溶液在使用过程中如果出现变色成棕色,则弃用。
- 参照表 3按顺序进行 EdU 反应液的配制:
- 去除 PBS,每孔加入 500μL EdU 反应液,室温避光孵育 30 分钟。
- 去除 EdU反应液,用 PBS 洗涤细胞 2-3 次。
- 染核,用 PBS将 500X 的 Hoechst 33342(试剂 F)稀释成 1X 的染色工作液,每孔加入 5 mL 染色工作液,室温避光染色 5-10 分钟。
- 去除染色工作液,用 PBS洗涤细胞 2 次。
- 荧光显微镜检测。如果条件限制,请避光 4℃湿润保存,3天之内检测。
组分 |
12 孔板样品数 |
||||
|
1 |
2 |
3 |
4 |
10 |
反应缓冲液(试剂 B) |
464 μL |
928 μL |
1392 μL |
1856 μL |
4640 μL |
催化剂溶液(试剂 C) |
10 μL |
20 μL |
30 μL |
40 μL |
100 μL |
荧光染料溶液(试剂 D) |
1 μL |
2 μL |
3 μL |
4 μL |
10 μL |
缓冲添加剂溶液 |
25 μL |
50 μL |
75 μL |
100 μL |
250 μL |
总体积 |
500 μL |
1 mL |
1.5 mL |
2 mL |
5 mL |
注意:按顺序配制适量 EdU 反应液 (现用现配,30 分钟内使用)
使用说明(组织切片)
动物体内EdU 的标记及切片样品的处理
a.动物体内 EdU的标记可参考相关文献。对于小鼠,可按照 10-200 mg/kg 的用量,把 EdU 用 PBS 配制成一定浓度,腹腔注射、特定组织或器官局部注射或者加入饮用水中,初次使用时建议对 EdU 的使用浓度进行一定的摸索。
b.标记4小时后或根据特定实验确定的适当时间后,取出所需的组织,按照常规步骤制作冰冻切片或石蜡切片。EdU标记的时间也可以参考相关文献自行调整。
c.对于冰冻切片:
可在组织周围用组化笔画圈,圈中滴加适量固定液,室温固定 15分钟。
去除固定液,用 PBS洗涤 2-3 次,每次 3 分钟。
去除 PBS,滴加适量透膜液室温孵育 10-15分钟。
去除透膜液,用 PBS洗涤 2 次,每次 3 分钟。
d.对于石蜡切片:
脱蜡:二甲苯脱蜡 5-10分钟,换用新的二甲苯脱蜡 5-10 分钟。无水乙醇 2 分钟,换新的无水乙醇 2 分钟。 90%乙醇 2 分钟。80%乙醇 2 分钟。70%乙醇 2 分钟。PBS 5 分钟。
去除 PBS,滴加适量透膜液室温孵育 10-15分钟。
去除透膜液,用 PBS洗涤 2 次,每次 3 分钟。
EdU 检测
- 配制缓冲添加剂溶液:用 3mL 去离子水溶解一管缓冲添加剂(试剂 E),混匀至全部溶解,即为缓冲添加剂溶液。配制后适当分装,并-20ºC 保存。缓冲添加剂溶液在使用过程中如果出现变色成棕色,则弃用。
- 参照表3顺序进行 EdU 反应液的配制:
- 去除 PBS,每个圈中滴加适量 EdU反应液,室温避光孵育 30 分钟。
- 去除 EdU反应液,用 PBS 洗涤 3 次,每次 3-5 分钟。
- 染核,用 PBS将 500X 的 Hoechst 33342(试剂 F)稀释成 1X 的染色工作液,每个圈中滴加适量染色工作液,室温避光染色 5-10 分钟。
- 去除染色液,用 PBS洗涤细胞 2 次。
- 用甘油或防荧光猝灭剂封片。
- 荧光显微镜检测。如果条件限制,请避光于 4℃湿润保存,3天之内检测。